Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio
ACI Avances en Ciencias e Ingenierías

SECCIÓN B: CIENCIAS DE LA VIDA

Vol. 11 Núm. 2 (2019)

Construcción y operación de una cámara anaeróbica de bajo costo para la siembra y el cultivo de bacterias sulfato reductoras

DOI
https://doi.org/10.18272/aci.v11i2.1303
Enviado
noviembre 14, 2018
Publicado
2019-05-30

Resumen

El objetivo del presente estudio fue construir y operar una cámara anaeróbica no costosa para el cultivo de bacterias sulfato reductoras (BSRs) en muestras ambientales de lodos. Una vez construida la cámara, las condiciones anaeróbicas al interior de la cámara fueron evaluadas a través del monitoreo de la concentración de oxígeno y la temperatura. En la cámara anaeróbica se alcanzaron las condiciones de anaerobiosis (< 0,1% O2) y la temperatura requerida (30ºC) para el cultivo de las BSRs. A continuación, se cultivó en placa (en un medio selectivo) cuatro muestras diferentes de lodo que fueron incubadas, contadas y microscópicamente observadas. Los resultados por cultivo en placa fueron comparados con los de contaje directo en cámara de Neubauer. Habiéndose demostrado que las condiciones ambientales en la cámara son las adecuadas para el cultivo de microorganismos anaeróbicos estrictos, las BSRs también fueron observadas mediante microscopía. En base a los resultados obtenidos por cultivo en placa y por recuento en cámara de Neubauer se determinó que no hubo diferencias significativas en la muestra de suspensión bacteriana, a diferencia de las muestras de lodos. Si bien es cierto que el cultivo de microorganismos demanda tiempo, esta técnica sigue siendo útil y confiable para el conteo microbiano. Finalmente, la cámara anaeróbica construida permite el cultivo de microorganismos anaeróbicos estrictos como las BSRs, responsables de la bioprecipitación de metales.

viewed = 2122 times

Citas

  1. REFERENCIAS
  2. Kant Bhatiaa, S., Kant Bhatiaa, R., Choia, Y., Kand, E., Kime, Y. & Yanga, Y. (2018). Biotechnological potential of microbial consortia and future perspectives. Critical Reviews in Biotechnology Journal Critical Reviews in Biotechnology. 38 (8).
  3. Hameed, S., Xie, L. & Ying, Y. (2018). Conventional and emerging detection techniques for pathogenic bacteria in food science: A review. Trends in Food Science & Technology 81(2018), 61-73.
  4. Cox, M. & Magels, J. (1976). Improved Chamber for the Isolation of Anaerobic Microorganisms. Journal of Clinical Microbiology. 4(1), 40-45.
  5. Stewart, E. J. (2012). Growing unculturable bacteria. J Bacteriol. 194(16), 4151-4160. Wagner, M. and Loy, A. (2002). Bacterial community composition and function in sewage treatment systems. Curr Opin Biotechnol. 13(1), 218-227.
  6. Locey, K. & Lennon, J. (2016). Scaling laws predict global microbial diversity. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113(21), 5970-5975.
  7. Castro, H., Williams, N. & Ogram, A. (2000). Phylogeny of sulfate-reducing bacteria1. FEMS Microbiology Ecology. 31 (2000), 1-9
  8. Ramell, F., Brasseur, G., Pieulle, L., Valette, O., Hirschler-Réa, A., Fardeau, M. & Dolla, A. (2015) Growth of the Obligate Anaerobe Desulfovibrio vulgaris Hildenborough under Continuous Low Oxygen Concentration Sparging: Impact of the Membrane-Bound Oxygen PLOS One. DOI:10.1371/journal.pone.0123455.
  9. Lens, P., Vallero, M., Esposito, G. & Zandvoor, M. (2003). Perspectives of sulfate reducing bioreactors in environmental biotechnology. Rev Environ Scie Biotechnol. 1, 311-325.
  10. Muyzer, G. & Stams, A. (2008). The ecology and biotechnology of sulphate-reducing bacteria. Nat Rev Microbiol. 6, 441-454.
  11. Agrawal, A. & Lal, B. (2009). Rapid detection and quantification of bisulfite reductase genes in oil field samples using real-time PCR. FEMS M. Ecology. 69(2), 301-312.
  12. Cohen, R. (2006). Use of microbes for cost reduction of metal removal from metals and mining industry waste streams. J. of Cleaner Production. 14, 1146-1157.
  13. St-Pierre, B. & Wright, G. (2017). Implications from distinct sulfate-reducing bacteria populations between cattle manure and digestate in the elucidation of H2S production during anaerobic digestion of animal slurry. Appl Microbiol Biotechnol. 101(13), 5543-5556.
  14. Ingvorsen, K., Nielsen, M. y Joulian, C. (2003). Kinetics of bacterial sulfate reduction in an activated sludge plant. FEMS Microbio. Ecol. 46(2), 129-137.
  15. Wakao, N. y Furusaka, Ch. (1972) A new agar plate method for the quantitative study of sulfate-reducing bacteria in soil. Soil Science and Plant Nutrition. 18(2), 39-44.
  16. Choi, E. & Rim, J. (1991). Competition and inhibition of sulfate reducers and methane producers in anaerobic treatment. Wat. Sci. Tech. 23, 1259-1264.
  17. Janssen, P., Yates, P., Grinton, E., Taylor, P. & Sait, M. (2002). Improved culturability of soil bacteria and isolation in pure culture of novel members of the divisions Acidobacteria, Actinobacteria, Proteobacteria, and Verrucomicrobia. Appl Environ Microbiol. 68(5), 2391-2396.
  18. Zamora A. & Malaver, N. (2012). Methodological aspects for the culture and quantification of heterotrophic sulfate-reducing bacteria. Revista de la Sociedad Venezolana de Microbiología. 32, 121-125.
  19. Engelkirk, P., Duben-Engelkirk, J. y Dowell Jr., J. (1992). Principles and Practice of clinical anaerobic bacteriology. Belmont, CA: Star P.
  20. Kendig, M. (2009). Design evaluation of an anaerobic chamber prototype A. Thesis presented to the Faculty of California Polytechnic State University, San Luis Obispo. In Partial Fulfillment of the Requirements for the Degree Master of Science in Biomedical Engineering.
  21. Aranki, A., Syed, S., Kenney, E. y Freter, R. (1969). Isolation of Anaerobic Bacteria from Human Gingiva and Mouse Cecum by Means of a Simplified Glove Box Procedure. Department of Microbiology, The University of Michigan, Ann Arbor, Michigan 48104.
  22. OSHA-a (2011). Laboratory Safety Guidance Occupational Safety and Health Administration U.S. Department of Labor OSHA 3404-11R 2011.
  23. OSHA-b (2011). Laboratory Safety Ergonomics for the Prevention of Musculoskeletal Disorders. OSHA Factsheet.
  24. Ochoa-Herrera, V., Q. Banihani, G. León, C. Khatri, J. A. Field y R. Sierra-Alvarez (2009). Toxicity of fluoride to microorganisms in biological wastewater treatment systems. Water Res. 43(13), 3177-3186.
  25. Méndez, G., Ochoa-Herrera, V., Trueba, G. y Sierra-Alvarez, R. (2015). Molecular analysis of microbial diversity present in a sulfate-reducing bioreactor with a limestone pre-column system for the removal of copper. MS thesis, Institute of Microbiology. Universidad San Francisco de Quito, Ecuador.
  26. Pérez, R., Cabera, G., Gómez, J., Abalos, A y Cantero, D. (2010). Combined strategy for the precipitation of heavy metals and biodegradation of petroleum in industrial wastewaters. J Hazard Mater. 182 (2010), 896-902.
  27. Cotta, M., Whitehead, T. y Zeltwanger, R. (2003). Isolation, characterization and comparison of bacteria from swine faeces and manure storage pits. Environmental Microbiology. 5, 737-745.
  28. Mohd Rasol, R., Yahaya, N., Noor, N., Abdullah, A. y Rashid, A. (2014). Mitigation of sulfate-reducing bacteria (SRB), Desulfovibrio vulgaris using low frequency ultrasound radiation. JCSE. 17, 1-17. ISSN 1466-8858.
  29. Aström, K. y Hägglund, T. (1984). Automatic Tuning of Simple Regulators with Specifications on Phase and Amplitude Margins. Automatica. 20(5), 645-651.
  30. Kogure, H., Simidu, U. y Taga, N. (1978). A tentative direct microscopic method for counting living marine bacteria. Journal of Microbiology. 25(1979), 415-420.
  31. Anderson, K., Sallisp, P. y Uyanik, S. (2003). Anaerobic treatment processes. The Handbook of Water and Wastewater Microbiology. 24, 391-426.

Artículos más leídos del mismo autor/a