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Bionucleares 2020

Vol. 12 Núm. 3 (2020): Aplicaciones Nucleares (2021)

Evaluación fenotípica de dos generaciones de plantas de arveja (Pisum sativum L.) provenientes de semillas irradiadas con rayos gamma para identificar resistencia a Ascochyta spp.

DOI
https://doi.org/10.18272/aci.v12i3.1918
Enviado
agosto 6, 2020
Publicado
2021-05-05

Resumen

RESUMEN

 El cultivo de arveja (Pisum sativum L.) es afectado en forma severa por Ascoquitosis, enfermedad que produce grandes pérdidas en rendimiento. No existen genotipos que presenten resistencia genética; para generarlos e identificar plantas resistentes, se indujeron mutaciones con rayos gamma en semillas de la variedad INIAP 436 Liliana, cuyo objetivo fue: evaluar fenotípicamente dos generaciones de plantas de arveja provenientes de semillas irradiadas. La investigación constó de tres etapas: primero, se determinó que la dosis óptima de radiación para inducir mutaciones fue de 120 Gy. En la segunda etapa se irradiaron a esa dosis 30000 semillas, se sembraron en campo junto a una población testigo constituyendo la generación M1. En la población tratada se observaron: disminución del porcentaje de emergencia, aparecimiento de plantas quiméricas y estériles. Las semillas cosechadas originaron la generación M2 (tercera etapa), que se sembró en campo en dos localidades junto a una población testigo, No existieron diferencias significativas entre los porcentajes de emergencia de las poblaciones en las dos localidades; se observaron plantas mutantes clorofílicas de las categorías albina, xantha y viridis. La frecuencia de mutaciones clorofílicas inducidas fue de 0,22%. Los valores de la efectividad y eficiencia mutagénica, fueron de 0,0018 y 0,0169, respectivamente. Se inocularon las plantas en etapa de floración con aislamientos de Ascochyta sp. y se evaluó su reacción. Fueron seleccionadas dos plantas con resistencia intermedia. Su progenie fueron sembrados bajo invernadero y a los 35 días se inoculó con Ascochyta spp; la reacción fue de susceptibilidad. En este estudio, el empleo de rayos gamma no fue efectivo para obtener resistencia a Ascoquitosis, debido posiblemente a que es un carácter poligénico, o la dosis de radiación fue baja con una probabilidad de un cambio simultáneo de esos genes es bastante baja.

Palabras clave: mutaciones, rayos gamma, mutantes clorofílicas, progenie, mejoramiento genético.

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Citas

  1. Skoglund, L., Harvenson, R., Chen, W., Dugan, F., Schwartz, H., Markell, S. (2011). Vulgamore Family Farms. , from http://www.vffarms.com/Images/Resources/Crop_Health/Peas/Ascochyta_Peas.pdf.
  2. Bretag, T., Keane, P., & Price, T. (2006). The epidemiology and control of ascochyta blight in filed peas: a review. Australian Journal of Agricultural Research(57), 883-902.
  3. Lawyer, A. (1984). Foliar Diseases Caused by Fungi: Diseases caused by Ascochyta spp. In D. Hagedorn, Compendium of Pea Diseases (pp. 11-15). St Paul, Minnesota: American Phytophatological Society Press.
  4. INIAP (Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias). (2010). Informe Técnico Anual. Estación Experimental Santa Catalina. Quito, Ecuador.
  5. Prina, A., Landau, A., Pacheco, M., & Hopp, E. (2010). Mutagénesis, TILLING y EcoTILLING. En G. Levitus, V. Echenique, C. Rubinstein, E. Hopp, & L. Mronginski (Edits.), Biotecnología y Mejoramiento Vegetal (Segunda edición ed., págs. 217-228). Castelar, Argentina: Argenbio INTA.
  6. Mba, C., & Shu, Q. (2012). Gamma Irradiation. En Q. Shu, B. Foster, & H. Nakagawa (Edits.), Plant Mutation Breeding and Biotechnology. (págs. 91-98). Vienna, Austria: S.L. CABI (Centre for Agriculture Bioscience International) Joint FAO IAEA.
  7. Lagoda, P. (2012). Effects of Radiation on Living Cells and Plants. En Q. Shu, B. Foster, & H. Nakagawa (Edits.), Plant Mutation Breeding and Biotechnology (págs. 123-133). Vienna: S.L. CABI (Centre for Agriculture Bioscience International). Joint FAO IAEA.
  8. Curtis, M. (2012). DNA Repair Pathways and Genes in Plant. En Q. Shu, B. Foster, & H. Nakagawa (Edits.), Plant Mutation Breeding and Biotechnology (págs. 57-59). Vienna, Austria: S.L. CABI (Centre for Agriculture Bioscience International). Joint FAO IAEA.
  9. FNCA (Forum for Nuclear Cooperation in Asia). (2004). Mutation Breeding Manual. (F. Medina, E. Amano, & T. S, Edits.) FNCA.
  10. Maluszynski, M., Szarejko, I., Chittaranjan, B., Nichterlein, K., & Lagoda, P. (2009). Methodologies for generating variability Part 4: Mutation techniques. En S. Ceccarelli, E. Guimarães, & E. Weltizien (Edits.), Plant Breeding and Farmer Participation (págs. 160-173). Roma, Italia: FAO.
  11. Dhulgande, G., Dhale, D., Pachkore, G., & Satpute, R. (2011). Mutagenic Effectiveness and Efficiency of Gamma Rays and Ethyl Methanesulphonate in Pea (Pisum sativum L.). Journal of Experimental Sciences, 3(2), 7-8.
  12. Peralta, E., Murillo, A., Mazón, N., Monar, C., Pinzón, J., & Rivera, M. (2010). Manual Agrícola de Fréjol y otras Leguminosas. Cultivos, variedades y costos de producción. (Segunda edición ed.). Quito, Ecuador: Programa Nacional de Leguminosas y Granos Andinos. Estación Experimental Santa Catalina. INIAP
  13. Zhang, J., Fernando, D., & Xue, A. (2003). Virulence and genetic variability among isolates of Mycosphaerella pinodes. Plant Disease(87), 1376-1383.
  14. McDonald, J. (2009). Handbook of Biological Statistics. Recuperado el 20 de enero de 2013, de http://udel.edu/~mcdonald/stattransform.html.
  15. Castellanos, G., Jara, C., & Mosquera, G. (2011). Guías Prácticas de Laboratorio para el Manejo de Patógenos del Frijol. Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).
  16. Wani, A. (2009). Mutagenic Effectiveness and Efficiency of Gamma Rays, Ethyl Methane Sulphonate and their combination treatments in Chickpea (Cicer arietinum L.). Asian Journal of Plant Science, 1-4.
  17. Onfroy, C., Tivoli, B., Corbiere, R., & Bouznad, Z. (1999). Cultural, molecular and pathogenic variability of Mycosphaerella pinodes and Phoma medicaginis var. pinodella isolates from dried pea (Pisum sativum) in France. Plant Pathology, 48, 218-229.
  18. Çiftçi, Y., Divalin Tϋrkan, A., & Khawar, K. (2006). Use of Gamma Rays to Induce Mutations in four Pea (Pisum sativum L) Cultivars. Turk J Biol, 29-37.
  19. Kon, E., Ahmed, O., Saamin, S., & Majid, N. (2007). Gamma Radiosensitivity Study on Long Bean (Vigna sesquipedalis). Am. J. Applied Sci, 12(4), 1090-1093.
  20. Borzouei, A., Kafi, M., Khazaei, H., Naseriyan, B., & y Majdabadi, A. (2010). Effects of gamma radiation on germination and physiological aspects of wheat (Triticum aestivum L.) seedlings. Pak. J. Bot, 42(4), 2281-2290.
  21. Mejri, S. M., Voisin, M., Delavault, P., Simier, P., Saidi, M., & y Belhadj, O. (2012). Variation in quantitative characters of faba bean after seed irradiation and associated molecular changes. Afr. J. Biotechnol,, 11(33).
  22. Evans, H. (1965). Effects of radiations on meristematig cells. Radiation Botany, 5(2), 171-182.
  23. Gómez, L., Torres, M., & Romero, M. (1984). Inducción de mutaciones en arveja (Pisum sativum L.) para la Sierra del Perú. (FAO/IAEA, Ed.) Induced mutations for crop improvement in America, 356
  24. Taiz, L., & Zeiger, E. (2006). Fisiología Vegetal. Castello de la Plana, España: Publicacions de la Universitat Jaume I.
  25. Balkema, G. (1971). Chimerism and diplontic selection. PhD Tesis Landlouwhogeschool. Wageningen, Holanda
  26. Prina, A., Landau, A., & Pacheco, M. (2012). Chimeras and Mutant Gene Transmission. En Q. Shu, P. Foster, & H. Nakagawa (Edits.), Plant Mutation Breeding and Biotechnology (págs. 184-188). S.L. CABI (Centre for Agriculture Bioscience International) Joint FAO/IAEA.
  27. Demchenko, S. & Avrutskaya, T. (1979) On the nature of the induced sterility of plants. Arabidopsis information service, (16) 84-88.
  28. Ekberg, I. (1969). Different types of sterility induced in barley by ionizing radiations and chemical mutagens. Hereditas. 63, 255-278
  29. Timmerman-Vaughan, G.,Frew, T.,Russell, A., Khan, T. Butler, R., Gilpin, M., Murray, S & Falloon, K. (2002). QTL Mapping of Partial Resistance to Field Epidemics of Ascochyta Blight of Pea. Crop Sci. 42:2100-2111.
  30. Prina, A. (1989). Consideraciones sobre la aplicación eficiente de la mutagénesis inducida en fitomejoramiento. Mendeliana, 9(1), 5-49.
  31. Pabón, L. (2011). Inducción de mutaciones mediante radiaciones gamma de (Passiflora edulis Sim var. edulis). Tesis de Grado. Universidad Nacional de Colombia.
  32. Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología (INAMHI). (2017). Anuario Meteorológico No. 53-2013. Quito, Ecuador.

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