Si bien el número de estudios en biología reproductiva de aves en el Neotrópico ha aumentado, aún contrasta con el conocimiento más completo disponible en otras regiones, como Europa [1,2], En el Neotrópico aún falta por describirse nidos de muchas especies o identificar si las descripciones realizadas son el patrón o la excepción. Además, se reguiere comprender los parámetros de reproducción, evaluar si hay o no temporalidad, determinar la puesta usual de cada especie, y cómo esto se refleja en general en la dinámica de las poblaciones [3], En las últimas décadas, el incremento del conocimiento de la biología reproductiva de las aves del Neotrópico, y en particular del Ecuador, ha tenido sustento en varias revistas regionales y globales, siendo las principales: Ornitología Neotropical y Cotinga [4], Es así gue entre 2014 y 2015, se publicaron 10 artículos sobre biología reproductiva de aves de Ecuador entre ambas revistas, todos en idioma inglés.

El Ecuador es un país megadiverso y un atributo importante de esta diversidad son las aves, representadas en el país por 1608 especies confirmadas y documentadas [5], Sin embargo, para la mayoría de estas especies aún hay poca información sobre su biología reproductiva: comportamiento reproductivo, ritmos de incubación, alimentación de pichones, estacionalidad de nidificación y descripciones formales de sus nidos [6], De todos los eventos de biología reproductiva en las aves (i.e, cortejo, cópula, acarreo de materiales para construcción de nidos, incubación, provisión de alimento para crías, cuidado parental, presencia de individuos con plumaje juvenil, u otros detalles del proceso de anidación), la mayoría de publicaciones en Ecuador se centran en descripciones casuales de nidos (e.g., [7-12]). Pocos son los trabajos gue han dado un seguimiento exhaustivo a todo el proceso de nidificación (e.g., [13,14]) o gue tienen datos de más de un nido para la misma especie (e.g, [15,16]).

Hay gue destacar gue artículos y notas cortas sobre historia natural continúan siendo necesarios, y una compilación de estos permitirá una mejor perspectiva de la biología reproductiva y la evolución de las especies [4], Para tener una efectiva comparación entre datos reproductivos de las especies es necesaria una estandarización de términos y metodologías [17], El presente trabajo tiene como objetivo estimular a investigadores y observadores de aves a la publicación de datos sobre biología reproductiva y gue normalicen la toma de datos en encuentros fortuitos o búsguedas sistematizadas de cualguier tipo de evento de biología reproductiva.

Para este trabajo realicé una revisión general de artículos publicados en revistas indexadas, prioricé mi análisis en artículos más recientes y con énfasis en las aves del Neotrópico. Empleé en el motor de búsgueda Google Académico (https://scholar.google.com), palabras clave como"biología reproductiva","nidos","aves"y sus respectivas traducciones en inglés. Revisé las metodologías empleadas en los artículos, compilando, junto con mis sugerencias, los datos gue deberían ser considerados para registrar un evento reproductivo de la manera más completa posible. Finalmente extraigo los términos habitualmente empleados en los manuscritos, tanto en inglés como en español, y elaboro una definición en base al contexto de los artículos.

La información gue se puede obtener en el campo sobre la biología reproductiva de las aves es muy amplia. Detalles puntuales gue no reguieren más gue una atenta observación, pueden proporcionan información valiosa (e.g, primeras descripciones de nido para una especie [12, 15], la compilación de eventos reproductivos de una región que da indicios de la temporalidad [7], o el reporte de anidación de especies cuya reproducción se desconocía en el país [10]).

Ante el encuentro de cualquier evento reproductivo es importante anotar datos básicos: (i) la identificación de la especie, (ii) la localidad, (iii) la fecha, (iv) la descripción geográfica y ecológica del sitio. En caso de tratarse de un nido se debe incluir una descripción de la estructura en donde este se ubica (e.g., en la copa de un árbol, sobre una estructura construida por humanos, adherido a una planta, etc.). Siempre es útil una fotografía o esguema del nidoy fotografías detalladas de la planta a la gue está adherida el nido para confirmar la identificación de la misma.

Entre las herramientas importantes para tomar datos de eventos de biología reproductiva están: receptor de sistema de posicionamiento global (conocido por su acrónimo en inglés GPS), cinta métrica (en el campo con una regla pegueña se puede colocar marcar en un palo para medir la altura de un nido gue está fuera de alcance, o se puede usar el brazo del investigador para referenciar alturas o profundidades de cavidades), calibrador (para las medidas de nidos huevos y aves, detalladas más adelante), balanza o pesólas, cámara fotográfica (el temporizador de la cámara puede ser muy útil para nidos fuera de alcance, programando al mayor lapso y sujetándola a un palo para llegar al nido) y brújula.

Para las fotografías tomadas en campo es muy útil una cartilla gue nos indigne la relación de tamaño y de color del objeto fotografiado. Adicionalmente una referencia de la orientación geográfica, gue pueda ser posicionada con la brújula, permitirá indicar la dirección de entrada del nido o la ubicación de los huevos. El color puede ser subjetivo al observador o la cantidad de luz del momento, por ello en la cartilla de referencia gue sugiero (fig. 1) incluyo la lámina de color de Encycolorpedia (http://encycolorpedia.es/), donde independientemente de la coloración de la imagen impresa o en pantalla, en la fotografía se podrá ubicar la posición en la lámina más similar al objeto fotografiado (e.g., un huevo), posteriormente en http://encycolorpedia.es/se debe seleccionar con el cursor, la misma ubicación escogida para obtener la descripción del color.

En el trabajo con seres vivos, la ética del investigador es primordial, por ello la toma de datos debe ser muy cuidadosa y consciente, procurando afectar en lo mínimo el desarrollo natural de los eventos, por ejemplo no tratar de rescatara un juvenil fuera del nido, lo más probable es gue esté aprendiendo a volar y sus progenitores estén cerca. La toma de datos de huevos y pichones debe realizarse en ausencia de los progenitores, se sugiere gue ante los llamados de alerta, el investigador no debería estar presente por más de 5 minutos [18], La periodicidad de la toma de datos debe ser considerada por el investigador en función del estrés gue se genere en los progenitores. Maclvor etal. [19] encontraron gue el monitoreo diario de nidos de Charadrios rnelodus, no incrementó el riesgo de depredación, sin embargo sugieren gue cada visita a los nidos sea desde la mayor distancia y el menor tiempo posibles. Hay evidencias gue el disturbio de los investigadores en los nidos no necesariamente involucra efectos negativos en el éxito de reproductivo, incluso algunos predadores se han mostrado más sensibles gue las especies estudiadas [20], pero toda precaución es necesaria para minimizar el impacto.

Considerando que las colecciones aún son necesarias, en particular en el Neotrópico [21] y que los huevos y nidos están pobremente representados en los museos nacionales (obs. pers.); es importante realizar colecciones (con los respectivos permisos lega les) porque son una qran fuente de información y permiten el desarrollo de diversos estudios [22], La mayor cantidad de información colectada, reqistrada con fotoqrafías o descrita en la libreta de campo, permitirá una correcta descripción y comparación con datos previamente publicados de los eventos de bioloqía reproductiva. A continuación detallo alqunas variables a considerar:

FIGURA 1

Sugerencia de cartilla de referencia para medida, color (Encycolorpedia) y norte magnético, para la toma de fotografías de nidos, huevos o pichones.

FORMA DEL NIDO

Simón y Pacheco [17] proponen nomenclaturas para varios tipos de nidos, que se aqrupan en cuatro principales que se describen a continuación:

1. 1. Simples: sin una estructura notoria, se pueden identificar dos: desnudo (unlined): cuando los nidos están en el suelo, aun si hay una leve excavación o limpieza en el área; y plataforma (platfomi): cuando alqo de material ha sido apilado o vaqamente entrelazado, incluso sobre aqua.
2. 2. Taza o copa (cup): cuando se asemeja a un recipiente, es importante notar cómo está soportada, si desde la base o lateralmente y a cuántas ramas o plantas está sujeta. También puede ser nombrado como nido abierto (open nest [23]) y ser voluminoso (bulky) o de poca profundidad (shallow/low).
3. 3. Cerrado (dosed): cuando existen paredes que albergan completamente la cámara de incubación; hay que considerar su forma e igualmente desde donde está soportada. A esta forma de nidos pertenecen los tipo bolsa (pouch-like nests), característicos de algunos Icteridos [24],
4. 4. Cavidad (cadty): cuando los huevos son depositados dentro de las cavidades naturales o artificiales. Por ejemplo es común entre alguna aves como los tragones, usar los termiteros (termttaria / terrnite nest) para sus nidos [12], Para este tipo de nidos es importante considerar la presencia o no de un túnel de acceso, su longitud y orientación; un espejo bucal y una linterna podrían ser muy útiles para visualizar el contenido.

Figura 2

Medidas sugeridas para considerar en un nido: a) diámetro interno, b) diámetro externo, c) profundi­dad, d) altura, e) diámetro de la entrada, f) profundidad de cavidad (Ilustraciones: Eliana Montenegro).

ENTORNO DEL NIDO

Knowlton [25] propone, para un detalle completo del entorno del nido, considerar en un radio de cinco metros a partir del nido y registrar todas las especies vegetales, su diámetro a la altura del pecho (DBH), el tamaño de la copa del árbol donde se encontró el nido, la orientación del nido, su distancia al follaje, distancia al tronco, número de ramas gue soportan el nido, el diámetro de estas y el porcentaje de cobertura sobre el nido.

COLOR DEL HUEVO

El cascaron del huevo de un ave está formado principalmente por carbonato de calcio, de color blanco al ojo humano; la variación del color se da por la interacción de las propiedades físicas y guímicas del cascaron y por la presencia de dos pigmentos: biliverdinas (tonalidades azul-verde) y protoporfirinas (colores oxidados, de amarillo a rojo a marrón) [26], Es importante una clara descripción del color y manchas de los huevos (fig. 4), para esto una fotografía puede ser muy útil y más aún si tiene de fondo una cartilla de referencia de colore, g. (fig. 1).

MEDIDAS

Nido: dependiendo del tipo de nido se pueden considerar medir diferentes ejes [17], para la mayoría de tipos, aplicaría considerar la distancia desde el suelo al borde inferior de la entrada del nido, su diámetro interno y externo, altura y profundidad. En caso de nidos en cavidades: diámetro de la entrada y profundidad de la cavidad desde el borde inferior de la entrada al piso de la cavidad e. g. [14-16] (fig. 2).

Huevos: largo y ancho mayor; hay gue ser muy cuidadosos si se remueven los huevos del nido, tratarlos con precaución y dejarlos en el mismo sitio y posición gue fueron tomados. Skutch [23] menciona gue en todos sus muéstreos midió los huevos sin sacarlos del nido. Incluso el toparlos con el calibrador podría generar fisuras, por lo gue es mejor tomar las longitudes dentro del nido y con una cinta o hilo, al cual después se lo pueda medir o fotografiarlos con una referencia de medida y posteriormente establecer sus dimensiones en la computadora.

Aves: se puede tomar varias medidas morfométricas tanto a adultos como a juveniles y polluelos. Winker [27] sugiere considerar: longitud del pico (desde el borde anterior del nostriIlo a la punta); longitud de la cuerda de ala; longitud de la cola (insertando una regla con tope en cero, en medio de las rectrices centrales) y longitud tarsometatarso (fig. 3).

Pesos

Es importante registrar periódicamente los pesos de los huevos, ya gue estos van perdiendo peso desde su puesta [8], mientras gue su volumen y dimensiones no cambian durante la incubación [28], También se puede considerar un registro periódico del peso de los pichones [29], Una vez finalice el proceso de nidificación, puede tomarse el peso seco del nido, también disgregarlo y pesar cada material [11],

Fenología

Se puede registrar las fechas más significativas: desde la construcción del nido hasta la independencia de las crías para establecer los períodos reproductivos; anotar día y hora de puesta y eclosión de cada huevo, de abandono del nido y días de permanencia con los padres. También se puede registrar el desarrollo del plumaje gue tienen los polluelos, realizando una descripción de cómo está el plumaje después de la eclosión, citando en gue día empieza a aparecer los cañones y en gué zonas del cuerpo, cuándo las plumas rompen los cañones y describiendo la coloración de las plumas en contraste con el plumaje de adulto [29]; una vez alcanzado el plumaje juvenil se desarrollan diferentes mudas gue están vinculadas con aspectos de su ciclo de vida, como la reproducción, el suministro de alimentos o la migración; generándose plumajes nupciales o de verano o reproductivos [30,31],

Ecología

Varios datos pueden ser muy útiles para visualizar diferencias regionales entre las especies o patrones entre las familias. En este contexto se podría considerar: la dedicación de cada sexo en la construcción del nido, incubación y acarreo de alimento a pichones [9], especificando la frecuencia de cada actividad (el número de veces) y la duración de cada actividad, que se puede expresar como el porcentaje entre el tiempo dedicado a cada actividad sobre el total del tiempo de observación [32]. En el acarreo de alimento se puede considerar los ítems entregados y si estos porcentajes van cambiando con el tiempo, para un detalle más específico de la dieta de la especie. Se puede notar también si los modos en que los adultos entran o salen del nido tienen un patrón específico o no [33], pueden presentar estrategias discretas para evadir depredadores. Para obtener este tipo de información pueden ser muy útiles las cámaras trampa [34]; para especies que no presentan evidente dimorfismo sexual, el sexado molecular y marcaje con anillas resulta óptimo [35].

Se puede notar también si los modos en que los adultos entran o salen del nido tienen un patrón específico o no [33], pueden presentar estrategias discretas para evadir depredadores. Para obtener este tipo de información pueden ser muy útiles las cámaras trampa [34]; para especies gue no presentan evidente dimorfismo sexual, el sexado molecular y mareaje con anillas resulta óptimo [35],

Figura 3

Medidas morfométricas sugeridas a) longitud del pico; b) longitud de la cuerda de ala [superior], longitud del ala plana [inferior], vista frontal; c) longitud de la cuerda de ala, vista lateral; d) longitud de la cola; e) longitud tarsometatarso (Ilustraciones: Eliana Montenegro).

Figura 4

Nombres de patrones en huevos con sus traducciones en inglés entre paréntesis

Agradecimientos

Este manuscrito se vio enriquecido por los comentarios de Caries Barriocanal, Jorqe Brito, Tjitte de Vries y revisores anónimos a quienes les aqradezco; también por la paciente ayuda con las fiquras a Eliana Monteneqro.

Referencias

Baillie, S.R. (1990). Integrated population monitoring of breeding birds in Britain & Ireland. Ibis, 132, 151-166. doi: http://dx.doi.Org/10.1111/j.1474-919X.1990.tb01035.x

Xiao, H., Hu, Y., Lang, Z., Fang, B., Guo, W, Zhang, Q., Pan, X. & Lu, X. (2016), How much do we know about the breeding biology of bird species in the world?. Journal of Avian Biology, doi: http://dx.doi.Org/10.1111/jav.00934

Marini, M. A., Borges, F. J., Lopes, L. E., Sousa, N. 0., Gressler, D. I., Santos, L. R., Paiva, L. V., Duca, C, Manica, L. I., Rodrigues, S. S., Franca, L. F., Costa, P. M., Franca, L. C., Heining, N. M., Silveira, M. B., Pereira, Z. P., Lobo, Y., Medeiros, R. C.S. & Roper, J. J. (2012). Breeding biology of birds in the Cerrado of central Brazil. Ornitología Neotropical, 23,385-405. Recuperadode https://sora.unm.edu/node/133324

Freile, J. F., Greeney, H. F., & Bonaccorso, E. (2014). Current Neotropical ornithology: Research progress 1996-2011. The Condor, 116(1), 84-96. doi: http://dx.doi.org/10.1650/C0ND0R-12-152-R1.1

Nilsson, J., Freile, J. F., Ahlman, R., Brinkhuizen, D. M., Greenfield, P. J., & Solano-Ugalde, A. (2014). Rare birds in Ecuador: Second animal report of the Committee for Ecuadorian Records in Ornithology (CERO). Avances en Gendas e Ingenierías, 6: B38-B50. Recuperado de http://www.usfq.edu.ec/publicaciones/avances/archivo_de_contenidos/Documents/volumen_6_numero_2/012_6_2_2014.pdf

Greeney, H. F. (2015). Anidación de la avifauna ecuatoriana: dónde estamos y hacia dónde vamos. En D.F. Cisneros- Heredia, J.F. Freile, E. Guevara (Eds), Archivos Académicos USFQ, Número 3, Resúmenes de la IV Reunión Ecuatoriana de Ornitología (pp. 9). Recuperado de http://www.usfq.edu.ec/publicaciones/archivosacademicos/Documents/Archivos_Academicos_USFQ_Numero_3.pdf

Greeney, H. F., Martin, P. R., Gelis, R. A., Solano-Ugalde, A., Bonier, F., Freeman, B., & Miller, E. I. (2011). Notes on the breeding of high-Andean birds in northern Ecuador. Bulletin of the British Ornithological Club, 131,24-31.

Greeney, H. F. (2006). The nest, eggs, and nestlings of the Rufous-headed Pygmy-Tyrant {Pseudotriccus ruficeps) in southeastern Ecuador. Ornitología Neotropical, 17,589-592. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/119796

Skutch, A. F. (1947). A nesting of the plumbeous kite in Ecuador. The Condor, (49) 25-31. doi: http://dx.doi.org/10.2307/1364425

Pozo-Zamora, G. M, Batallas, D., Echeverria-Vaca, G., & Garzón, C. (2015). Observaciones sobre el Zambullidor Grande Podiceps major (Aves: Podicipedidae) en Ecuador, con el primer registro de anidación y la descripción de vocalizaciones. Avances en Ciencias e Ingenierías, 7, B1-B4. Recuperado de http://www.usfq.edu.ec/publicaciones/avances/archivo_de_contenidos/Documents/volumen_7_numero_1/B1-7-1-2015.pdf

Freile, J. F. (2016). Nesting of the Scrub Tanager (Jungara vitriolina} in Andean Ecuador. Ornitología Neotropical, 26(1), 51-58. Recuperado de http://journals.sfu.ca/ornneo/index.php/ornneo/artide/view/12/5

Greeney,H. F., & Cadena-Ortiz, H. (2016) First nest description for Amazonian Trogon Trogon ramonianus, from eastern Ecuador, and a review of breeding data for Green-backed Trogon T. viridis. Cotinga online 38,41-42. Recuperado de http://www.neotropicalbirdclub.org/wp-content/uploads/2016/02/Greeney-Cadena-0rtiz.pdf

deVries, T. (1975). The breeding biology of the Galapagos Hawk, Buteo galapagoensis. Le Gerfaut, 65,29-57. U.Greeney, H. F., Kirwan, G. M., & Miller, E. T. (2012). Nesting biology of the Long-wattled Umbrellabird Cephalopterus penduliger. Part II: nestling provisioning. Cotinga, 34 online: 23-27. Recuperado de http://www.neotropicaIbirdclub.org/wp-content/uploads/2015/03/C34-Greeney2.pdf

Duraes, R., Greeney, H., & Hidalgo, J. R. (2008). First description of the nest and eggs of the Western Striped Manakin (Machaeropterus regulus striolatus), with observations on nesting behavior. Ornitología Neotropical, 19(2), 287-292. Recuperadode https://sora.unm.edu/node/133428

Ju i ña, M. E., Harris, J. B. C, Greeney, H. F., & Hickman, B. R. (2010). Descripción del nido y cuido parental de la Estrellita Esmeraldeña Khaetocercus berlepschi) en el occidente del Ecuador. Ornitología Neotropical, 21,313-322. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/133173

Simon, J. E., & Pacheco, S. (2005). On the standardization of nest descriptions of neotropical birds. Revista Brasileira de Ornitología, 13(2), 143-154. Recuperado de http://www.museu-goeldi.br/revistabrornito/revista/index.php/BJO/article/vie/2201/pdf_329

Martin, T. E., & Geupel, G. R. (1993). Nest-Monitoring Plots: Methods for Locating Nests and Monitoring Success. Journal of field Ornithology, 64(4), 507-519. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/51838

Madvor, L. H., Melvin, S. M, & Griffin, C. R. (1990). Effects of research activity on piping plover nest predation. The Journal of Wildlife Management, 443-447. doi: http://dx.doi.org/10.2307/3809656

ba nez-Alamo, J. D., Sanllorente, 0., & Soler, M. (2012). The impact of researcher disturbance on nest predation rates: a meta-analysis. Ibis, 154(1), 5-14. doi: http://dx.doi.Org/10.111l/j.1474-919X.2011.01186.x

Vuilleumier, F. (1998). The need to collect birds in the Neotropics. Ornitologla Neotropical, 9(2), 201-203. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/119303

Green, R. E. & Scharlemann, J. P. W. 2003. Egg and skin collections as a reference for long-term ecological studies. Bulletin of the British Ornithologists' Club 123: 165-176. Recuperado de http://www.biodiversitylibrary.org/Item/130382#page/167/mode/1u

Skutch, A. F. (1954). Life histories of Central American birds: families Fringillidae, Thraupidae, Ideridae, Parulidaeand CoerebidaeM. 31. Berkeley: Cooper Ornithological Society.

Robinson, S. K. (1985). The Yellow-rumped Cacigue and its associated nest pirates. Ornithological Monographs, 36,898- 907. doi: http://dx.doi.org/10.2307/40168323

Knowlton, J. L. (2010). Breeding records of birds from the Tumbesian region of Ecuador. Ornitologla Neotropical, 21(1), 109-147. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/133152

Hanley, D., Grim, T., Cassey, P, & Hauber, M. E. (2015). Not so colourful after all: eggshell pigments constrain avian eggshell colour space. Biology letters, 11(5), 20150087. doi: http://dx.doi.org/10.1098/rsbl.2015.0087

Winker, K. (1998). Suggestions for measuring external characters of birds. Ornitologla Neotropical, 9,23-30. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/!19282

Hoyt, D.F. (1979). Practical methods of estimating volume and fresh weight of bird eggs. The Auk, 96(1), 73-77. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/23238

Greeney, H. F. (2008). Nestling growth and plumage development of the Spotted Barbtail [Premnoplex brunnescens). Kempffiana, 4, 21-29. Recuperado de http://www.museonoelkempff.org/sitio/lnformacion/KEMPFFIANA/Kempffiana%204(1)/21-29.pdf

Howell, S. N., Corben, C, Pyle, R, & Rogers, D. I. (2003). The first basic problem: a review of molt and plumage homologies. The Condor, 105(4), 635-653. doi: http://dx.doi.org/10.1650/7225

Humphrey, P. S., & Parkes, K. C. (1959). An approach to the study of molts and plumages. The Auk, 76(1), 1-31. doi: http://dx.doi.org/10.2307/4081839

Wetherell, E., Greeney, H.F., & Port, J. (2015). Breeding biology of speckled hummingbird Adelomyia melanogenys in eastern Ecuador. Cotinga online, 37, 43-46. Recuperado de http://www.neotropicalbirdclub.org/wp-content/uploads/2015/03/Wetherell-et-al.pdf

Greeney, H. F., McLean, A., Biicker, A. D., Gelis, R. A., Cabrera, D., & Sornoza, F. (2006). Nesting biology of the long- wattled Umbrellabird (Cephalopteruspenduliger'i. Part I: incubation. Ornitologla Neotropical, 17,395-401. Recuperado de https://sora.unm.edu/node/!19773

King, D. I, DeGraaf, R. M., Champlin, P. J., & Champlin, T. B. (2001). A new method for wireless video monitoring of bird nests. Wildlife Society Bulletin, 29(1), 349-353. Recuperado de http://www.Jstor.org/stable/3784019

Greeney, H. E, Dyrcz, A., Mikusek, R., & Port, J. (2015). Cooperative breeding at a nest of Slaty-backed Nightingale- Thrushes (Catharus fuscater). The Wilson Journal of Ornithology, 127(2), 323-325. doi: http://dx.doi.org/10.1676/wils-127-02-323-325.1

Skutch, A.F. (1961). The nest as a dormitory. Ibis, 103(1), 50-70. doi: http://dx.doi.org/10.1111/J.1474-919X.1961.tb02420.x

Wright, Z., Port, J., & Greeney, H. F. (2017). Male and female parental care in the Golden-rumped Euphonia (Euphoria cyanocephala). Ornitologla Colombiana, 16, eNB07. Recuperado de http://asociacioncolombianadeornitologia.org/wp-content/uploads/2017/12/1710.pdf

De los trabajos revisados para el presente manuscrito recabo los términos frecuentemente empleados, sugiriendo su correspondiente traducción y definición:

Ahuyentar (flushed):: Cuando una persona pasa cerca de un ave y esta se asusta y huye; en ocasiones esto permite evidenciar el nido.

Bolsas fecales (fecal sacs):: Son los desechos de los polluelos, que habitualmente son retirados del nido por los progenitores.

Centinela (sentinel):: es la actividad de vigilancia de un miembro de la pareja, desde una percha cercana, emitiendo llamados de alerta ante cualguier amenaza para gue la pareja escape o se prepare para proteger el nido.

Comisuras (gapes): Uniones en la base del pico gue en los pichones usualmente son muy pronunciadas y de colores claros, para gue los padres sean más eficientes al alimentarlos.

Descendencia (offspring): el resultado de la reproducción de una pareja de aves van tomando los siguientes nombres de acuerdo a sus clases de edad, en el siguiente orden: pichón, juvenil, inmaduro y subadulto.

Diente de huevo (egg-tooth): Prominencia calcárea presente en la mayoría de pichones, ubicada en la punta del pico para romper la cáscara del huevo al final del periodo de incubación.

Eclosión (hatching): Momento en el que el pichón sale del huevo.

Inmaduro (immature): descendencia de las aves considerada posterior al periodo de dependencia y cuando ha perdido su plumaje juvenil

Juvenil o volantón (juvenil / fledgling): descendencia de las aves considerada desde que fuqan del nido, es decir abandonan el nido por sus propios medios, hasta que se independizan del cuidado parental.

Muda (molting): proceso de pérdida natural de plumas y su subsecuente crecimiento de nuevas, por el cual se alcanzan los diferentes plumajes, e. q. plumaje juvenil, plumaje reproductivo.

Nidada (broods): Número de descendientes o aves eclosionadas.

Nidífugo (precocial): cuando el pichón nace con estado de desarrollo avanzado, que le permite movilizarse y auto tequiar su temperatura; nacen con los ojos abiertos y plumas a lo larqo de sus alas y plumón en su cuerpo.

Nidícola (altricial): cuando el pichón salen del huevo sin estar completamente desarrollado, sin plumas y ojos cerrados.

Nido (nest): Estructuras para incubar huevos y criar polluelos, y en alqunas especies pueden tener un uso secundario como refuqio [36]

Nido comunal (communalnest): cuando varias hembras depositan sus huevos en una misma estructura.

Período de atención al nido (nest attentiveness): Tiempo que el adulto emplea incubando, empollando y alimentando (provisioning) en el nido, no incluye el tiempo que los adultos pasan en las cercanías del nido [32],

Período de construcción del nido (nest-building): desde que el o los adultos empiezan con el acarreo de material hasta que se desova el primer huevo.

Período de dependencia (dependencyperiod): Tiempo desde que eclosiona el primer pichón hasta que toda la descendencia se independizan del cuidado parental.

Período de empollamiento (brooding / nestling): Tiempo desde que los adultos calientan o cubren a los pichones hasta que el último pichón vuela del nido.

Período de incubación (incubation):   Tiempo en que los adultos calientan los huevos desde que el último huevo fue puesto hasta que todos hayan eclosionado.

Período de puesta (Jaying): Tiempo desde que la hembra desova el primer huevo hasta el último.

Pichón (nestling /chick): descendencia de las aves considerada desde que eclosionan los huevos hasta que fuqan del nido.

Plumón (down feathers): Plumas de qran superficie pero poca masa lo que les provee suavidad y permite brindar abriqo, constituyen el primer plumaje de los polluelos.

Subadulto (subadult): descendencia de las aves considerada posterior al periodo de dependencia y cuando su plumaje ya es de adulto pero aún no bien definido.

Tamaño de puesta (clutch size): Número de huevos puestos poruña hembra en el nido.

Temporadas de cría (breeding seasons): Épocas en las que hay picos de reproducción en las aves; más marcado en las zonas templadas que en los trópicos.

Vainas o cañones (feathersheaths/pin feather/blood feather): La pluma aun envuelta cuando recién emerqe de la piel.

Vuelo de amague (flyby): Comportamiento en el que un miembro de la pareja vuela hacia el nido e inqresa, al mismo tiempo que el otro miembro también se diriqe al nido, cruzando el sendero del primero y provocando un breve y confuso destello de alas y movimiento, podría ser una estrateqia para distraer a los depredadores [37],